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【应用案例】Omi双平台构建“肝-肾”器官芯片,揭示他克莫司跨器官代谢机制
2026-08-07150次
临床器官移植中常用的免疫抑制剂他克莫司(Tacrolimus)治疗窗口极窄,且容易引发肾毒性。该药物主要在肝脏内被代谢,随后在肾脏产生毒性,传统的单一细胞模型无法准确评估其跨器官交互与药物间相互作用。 法国利摩日大学研究团队利用 Omi 全自动器官芯片双平台,成功构建了“肝-肾”双器官芯片联用模型,实现 48 小时连续循环灌注,再现了药物的跨器官代谢与排泄轨迹。

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引言

临床器官移植中常用的免疫抑制剂他克莫司(Tacrolimus)治疗窗口极窄,且容易引发肾毒性。该药物主要在肝脏内被代谢,随后在肾脏产生毒性,传统的单一细胞模型无法准确评估其跨器官交互与药物间相互作用。

法国利摩日大学研究团队利用 Omi 全自动器官芯片双平台,成功构建了“肝-肾”双器官芯片联用模型,实现 48 小时连续循环灌注,再现了药物的跨器官代谢与排泄轨迹。

 

PT-on-chip Liver-on-chip Omi 平台下的流体连接

 

跨器官模型机制

他克莫司在肝脏被 CYP3A4/5 酶代谢为 DM-他克莫司等产物。随后经血液循环到达肾脏,通过 P-gp 等外排转运体进行尿液排泄(约占10%)。肾脏的药物蓄积与转运构成了其长期肾毒性的潜在病因

Omi 平台在共享微流控回路中串联了肝细胞(HepaRG)和近端小管细胞(RPTEC/TERT1),使肝脏代谢物顺着流体进入肾脏,在体外重现了人体吸收、分布、代谢和排泄(ADME)全过程

 

他克莫司(Tacrolimus)药物从肝代谢到肾排泄的机制图

 

Omi 平台自动化构建流程

细胞模型构建:肾细胞接种于多孔膜微流控芯片形成上皮屏障;肝细胞培养为 3D 球体以保留其特异性功能

自动化灌注:Omi 软件提供向导式操作,自动完成灌注

精确的流量控制:肝、肾芯片分别设置 20 μL/min 10 μL/min 的流速,持续灌注 48 小时。

 

细胞铺板到 Omi 双系统连接的实景图及循环通路

 

核心实验结果

细胞生理功能维持

流控条件下,肾近端小管细胞出现了明确的功能分区。荧光染色证实,3D 肝球体稳定表达了 CYP3A4 代谢酶以及 P-gpOATP1B1 等跨膜转运蛋白,具备了处理药物的生理基础。

 

细胞在流控前后的明场图及肝细胞蛋白荧光染色图

 

跨器官代谢轨迹的定量分析

质谱分析(LC-MS/MS)结果显示:

肝脏区域: 给药后,肝脏腔室他克莫司浓度迅速下降,在约 8 小时后趋于平稳,并明确检测到代谢物 DM-他克莫司。

肾脏区域: 给药约 10 小时后,肾脏腔室他克莫司浓度达到峰值,但浓度仅为肝侧的约十分之一。该数据符合他克莫司主要经胆汁排泄、少量经尿液排泄的临床规律。

 

他克莫司(Tacrolimus)药物及代谢物在两腔室浓度随时间变化的 AUC 曲线图

 

代谢组学响应差异

主成分分析(PCA)表明,无论是单独使用他克莫司,还是联合二甲双胍处理,肾脏腔室的代谢谱变化均远比肝脏剧烈。这证实了代谢主要发生在肝脏,而肾脏是承受毒性代谢变化的主要器官。

 

PCA 散点图

 

结论

“肝-肾”双器官联用模型在体外成功验证了他克莫司的肝代谢与肾清除过程,为探索多药联合和系统级药代动力学(PK)提供了转化研究平台。

欢迎联系我们,获取《Liver-Kidney Organ-on-Chip》原版 Application Note PDF 文件。

 

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